84±0.02、0.82±0.02、0.57±0.03,30umol/L浓度细胞存活率分别为0.73±0.03、0.64±0.04、0.42±0.02;50umol/L浓度细胞存活率,分别为0.62±0.04、0.42±0.02、0.22±0.01;②不同浓度LY294002分别作用于胃癌细胞4、8、12小时,细胞凋亡指数(%)则呈逐渐增加的趋势,其中10umol/L浓度细胞凋亡指数(%)分别为5.23±0.21、13.23±0.31、18.23±0.25,30umol/L浓度细胞凋亡指数(%)分别为6.40±0.17、15.33±0.42、20.07±0.31,50umol/L浓度细胞凋亡指数(%)分别为8.40±0.10、25.17±0.21、32.17±0.21;③P27KIP1在胃癌细胞中为胞质弱表达或不表达,经LY294002作用后,胞质和胞核均有表达;④Caspase

9在胃癌细胞中为胞质弱表达或不表达,经LY294002作用后,胞质表达明显增强。 结论LY294002能显著抑制胃癌细胞SGC7901的增殖,诱导其凋亡,其机制可能是增强增殖蛋白P27KIP1表达,并促进其向核内转移,同时增强凋亡蛋白Caspase 9的表达,从而使细胞产生G1期阻滞。
肝细胞生长因子(Hepatocyte growth factor.HGF)是一种多肽生长因子,首先从部分肝脏切除大鼠的血清中提取。由于其对肝细胞具有强的丝裂原作用.因此命名为肝细胞生长因子。最初它仅仅被认为是肝细胞增殖的丝裂原之一[1]

SGC-CBP30体外 ,以后逐渐发现其具有促进肿瘤进展的多种功能,HGF生物学活性是由原癌基因c-met编码的跨膜受体蛋白所介导,对卵巢癌等多种肿瘤的失控性生长发挥重要的作用[2]。 HGF与c-met结合后,受体发生自身磷酸化,由此激活受体的内在酪氨酸激酶活性,进而引起细胞内一系列信号转导途径的级联激活,从而调节细胞的增殖、分化、运动和血管生成等。卵巢恶性肿瘤细胞中HGF/c- met的表达与MVD指数密切相关,提示可能由于细胞HGF/c- met蛋白异常高表达,导致其对HGF敏感性增强,从而促使该细胞过度增殖、分化乃至恶化[3]。 HGF是一种血管生成的强大诱导剂,可诱发内皮细胞增殖和迁移,刺激体内新血管的生成。因此,本课题旨在通过研究HGF及其受体在卵巢癌细胞中的表达,揭示HGF及其受体在卵巢癌等多种肿瘤的失控性生长及其转移过程中发挥的重要作用,并进一步探讨抗卵巢癌药物紫杉醇对HGF/c- met信号传导通路的调控。 目的: 1.明确HGF及其受体c- met基因及其蛋白在卵巢癌中的表达规律。 2.明确HGF与c-met在卵巢癌中表达的相关关系。 Selleck GDC0994 3.明确HGF/c-met在卵巢癌细胞侵袭转移过程中的作用。 4.探讨抗卵巢癌药物紫杉醇对HGF/c- Carfilzomib核磁共振 met表达及作用的影响。 方法: 1.免疫组化检测HGF/c-met蛋白在人卵巢癌组织中的表达水平。 2. RT—PCR,原位杂交技术检测体外培养的人卵巢癌细胞中HGF/c-met基因的表达水平。 3.Transwell侵袭小室检测HGF/c-met对卵巢癌细胞侵袭能力的影响。 4.MTT法、扫描电镜分析紫杉醇干预后对人卵巢癌细胞生长的影响。 结果: 1.卵巢肿瘤组织中存在HGF/c-met蛋白的高水平表达,二者与卵巢癌的发生、侵袭和转移密切相关。

2.体外培养的人卵巢癌细胞系H0-8910中存在HGF mRNA及c-metmRNA表达,一定浓度的HGF可以上调c-met的表达。 3. Transwell小室培养24小时后用fibronectin将穿透的细胞粘在膜的反面,染色后显微镜下人工计数,发现HGF/c-met诱导组的细胞侵袭能力明显增强。 4.扫描电镜下观察,发现HGF/c-met在细胞核细胞膜均表达强烈.但是在另一组加入一定工作浓度的紫衫醇后发现抑制其表达,显示图象所需激发电压也增高。 结论: 1.体外培养的卵巢癌肿瘤细胞和人的卵巢肿瘤组织中均存在着HGF/c-met的明显表达,而且呈相关关系。 2.HGF/c-met基因及其蛋白表达,使人卵巢癌细胞的侵袭能力明显增强。 3.抑制HGF/c-met基因及其蛋白的表达,是紫杉醇对卵巢肿瘤细胞抑制杀伤作用的重要途径之一。
目的： 促脑卒中后的血管新生治疗是近年来抗脑缺血药物研究的热点之一。羟基红花黄色素A(hydroxysafflor yellow A，HSYA)是传统活血化瘀中药红花的主要活性成分之一。我们前期研究结果提示HSYA可能通过促进血管新生而发挥脑保护作用，本研究旨在对其促脑缺血后血管新生的早期分子基础做初步探讨。 方法： 1．建立线栓法致大鼠大脑中动脉阻塞(Middle cerebral artery occlusion，MCAO)模型，设缺血后6h、12h、24h三个时间点，每个时间点分为假手术组(n=8)、模型组(n=8)、阳性对照药组(MK801 0.